آمار
| تعداد نشریات | 8 |
| تعداد شماره‌ها | 309 |
| تعداد مقالات | 3,880 |
| تعداد مشاهده مقاله | 7,706,374 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 2,808,568 |
اثر هشت هفته تمرین هوازی پس از پیوند سلول‌های بنیادی مغز استخوان بر سطوح فاکتور رشد اندوتلیال عروقی و دوپامین جسم مخطط موشهای مدل پارکینسون | ||
| فیزیولوژی ورزشی | ||
| مقاله 6، دوره 8، شماره 32، دی 1395، صفحه 101-114 اصل مقاله (1.03 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22089/spj.2016.869 | ||
| نویسندگان | ||
| سید عبداله هاشم ورزی1؛ علی حیدریان پور* 2؛ ضیاء فلاح محمدی3؛ محسن پورقاسم4 | ||
| 1دانشجوی دکتری فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه بوعلی سینا همدان، همدان، ایران | ||
| 2دانشیار گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه بوعلی سینا همدان، همدان، ایران | ||
| 3دانشیار گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه مازندران، مازندران، ایران | ||
| 4استاد مرکز تحقیقات بیولوژی سلولی و مولکولی، دانشگاه علوم پزشکی بابل | ||
| چکیده | ||
| هدف از پژوهش حاضر، بررسی اثر هشت هفته تمرین هوازی بر فاکتور رشد اندوتلیال عروقی و دوپامین جسم مخطط در موشهای پارکینسونی، پس از پیوند سلول‌های بنیادی مغز استخوان بود. بدین‌منظور، 35 موش صحرایی نر هفت هفته‌ای با وزن 300ـ250 گرم به‌صورت تصادفی به گروههای کنترل سالم، پارکینسونی کنترل، سلول‌درمانی، تمرین و سلول‌درمانی + تمرین تقسیم شدند. برای ایجاد مدل پارکینسونی، تخریب جسم مخطط با تزریق پنج میکروگرم محلول شش- هیدروکسی دوپامین به‌صورت استریوتاکسی صورت گرفت و برای تأیید آن از آزمون چرخشی آپومورفین استفاده شد. علاوه‌براین، به‌منظور جداسازی سلول‌های بنیادی، از مغز استخوان ران و درشت‌نی موشهای صحرایی نر شش تا هشت هفته‌ای استفاده شد که پس از کشت، حدود 105 سلول در دو میکرولیتر محیط از طریق کانال به داخل جسم مخطط گروههای دریافت‌کنندۀ سلول تزریق شد. همچنین، تمرین شامل هشت هفته دویدن روی نوارگردان با سرعت 15 متر بر دقیقه در دو وهلۀ 15 دقیقه‌ای و پنج روز در هفته بود. قابل‌ذکر است که فاکتور رشد اندوتلیال عروقی و دوپامین به روش الایزا اندازه‌گیری شد. یافته‌ها نشان می‌دهند که مقادیر فاکتور رشد اندوتلیال عروقی و دوپامین جسم مخطط در گروه تمرین، سلول و به‌ویژه تمرین + سلول، افزایش معناداری نسبت به گروه کنترل پارکینسون داشته است (0.05P≤). به‌طور‌کلی، نتایج پژوهش حاضر، اثر مثبت هشت هفته تمرین روی نوارگردان در موشهای پارکینسونی پیوند‌شده با سلول‌های بنیادی مغز استخوان را مورد‌تأیید قرار داد که می‌تواند به‌عنوان یک روش کمک‌کننده به درمان غیردارویی مورد‌توجه قرار گیرد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| تمرین هوازی؛ سلول بنیادی مغز استخوان؛ فاکتور رشد اندوتلیال عروقی؛ دوپامین؛ پارکینسون | ||
| مراجع | ||
|
1. Zigmond M J, Smeyne R J. Exercise: Is it a neuroprotective and if so, how does it work? Parkinsonism & Related Disorders. 2014; 20(3): 123-7.
2. Young H E, Hyer L, Black Jr A C, Robinson Jr J S. Treating Parkinson disease with adult stem cells. J Neurol Disord. 2013; 1(2): 1-8.
3. Haji Ghasem Kashani M, Ghorbanian M T, Hosseinpour L. Transplantation of deprenyl-induced Tyrosine hydroxylase-positive cells improves 6-OHDA-lesion rat model of Parkinson’s disease: Behavioral and immunohistochemical evaluation. Cell Journal (Yakhteh). 2013; 15(1): 55-64. (In Persian).
4. Han SC, Mal SS, Wook S, Tae-WJ, Baek VL, Young PK, et al. Treadmill exercise alleviates short-term memory impairment in 6-hydroxydopamine-induced Parkinson’s rats. Journal of Exercise Rehabilitation. 2013; 9(3): 354-61.
5. Anstrom KK, Schallert T, Woodlee MT, Shattuck A, Roberts D. Repetitive vibrissae-elicited forelimb placing before and immediately after unilateral 6-hydroxydopamine improves outcome in a model of Parkinson's disease. Behavioral Brain Research. 2007; 179(2): 183-91.
6. Choe M, Koo BS, An GJ, Jeon S. Effects of treadmill exercise on the recovery of dopaminergic neuron loss and muscle atrophy in the 6-OHDA lesioned Parkinson's disease rat model. The Korean Journal of Physiology & Pharmacology. 2012; 16(5): 305-12.
7. Wang T, Liu Y, Wang X, Yang N, Zhu H, Zuo Ping P. Protective effects of octacosanol on 6-hydroxydopamine-induced Parkinsonism in rats via regulation of ProNGF and NGF signaling. Acta Pharmacologica Sinica. 2010; 31(4): 765–74.
8. Chitsaz A, Maracy M, Basiri K, Izadi Boroujeni M, Tanhaei A P, Rahimi M, et al. 25-hydroxyvitamin D and severity of Parkinson’s disease. International Journal of Endocrinology. 2013; 10(11): 1-4. (In Persian).
9. Fallah-Mohammadi Z, Hajizadeh-Moghaddam A, Aghasi M, Esmaeili A H. Neuroprotective effects of voluntary exercise and hydro alcoholic extraction of Eriobotrya Japonica on dopamine and tyrosine hydroxylase in the striatum of Parkinsonian rats. Koomesh. 2013; 15(1): 31-38. (In Persian).
10. Fallah Mohammadi Z, Mohammadi R, Aslani J. Pretreatment effects of Eriobotrya Japonica extraction on malondialdehyde (MDA), brain-derived neurotrophic factor (BDNF) and superoxide dismutase (SOD) levels in Hippocampus of rats with Parkinson's disease induced by 6-Hydroxydopamine following 12 weeks of voluntary exercise. Journal of Isfahan Medicine Scholar. 2014; 32(274): 120-30. (In Persian).
11. Al-Jarrah M. Exercise training and rehabilitation of brain in Parkinson’s disease. Clinical Medicine Research. 2013; 2(2): 11-17.
12. Yasuhara T, Shingo T, Date I. The potential role of vascular endothelial growth factor in the central nervous system. Rev Neurosci. 2004; 15(4): 293-307.
13. Yasuhara T, Hara K, Maki M, Matsukawa N, Fujino H, Date I, et al. Lack of exercise, via hind limb suspension, impedes endogenous neurogenesis. Neuroscience. 2007; 149(2): 182–91.
14. Haji Ghasem Kashani M, Tiraihi T, Ghorbanian M T, Abrari K. In vitro expression of BDNF, GDNF, NGF, NT3 and NT4/5 genes in selegiline induced bone marrow stromal cells. Yakhteh Medical Journal. 2010; 11(4): 400-7. (In Persian).
15. Capitelli C S, Lopes C S, Alves A C, Barbiero J, Oliveira L F, Silva V J, et al. Opposite effects of bone marrow-derived cells transplantation in MPTP-rat model of Parkinson’s disease: A comparison study of mononuclear and mesenchymal stem cells. International Journal of Medical Sciences. 2014; 11(10): 1049-64.
16. Gibson A S J, Gao G D, McDonagh K, Shen S. Progress on stem cell research towards the treatment of Parkinson’s disease. Stem Cell Research & Therapy. 2012; 3(11): 1-10.
17. Radak Z, Kumagai Sh, Taylor A W, Naito H, Goto S. Effects of exercise on brain function: Role of free radicals. Appl Physiol Nutr Metab. 2007; 32(5): 942-6.
18. Mabandla M V, Russell V A. Voluntary exercise reduces the neurotoxic effects of 6-hydroxydopamine in maternally separated rats. Behavioral Brain Research. 2010; 211(1): 16-22.
19. Valero MC, Heather DH, Jianming L, Kai Z, Marni DB. Eccentric exercise facilitates mesenchymal stem cell appearance in skeletal muscle. Plos One. 2012; 7(1): 1-11.
20. Fathi F, Altiraihi T, Mowla S J, Movahedin M. Transplantation of retinoic acid treated murine embryonic stem cells & behavioral deficit in Parkinsonian rats. Indian J Med Res. 2010; 131(5): 536-44. (In Persian).
21.Tajiri N, Yasuhara T, Shingo T, Kondo A, Yuan W, Kadota T, et al. Exercise exerts neuroprotective effects on Parkinson's disease model of rats. Brain Research. 2010; 13(10): 200-7. (In Persian).
22. Landers M R, Kinney J W, Breukelen F V. Forced exercise before or after induction of 6-OHDA-mediated nigrostriatal insult does not mitigate behavioral asymmetry in a hemiparkinsonian rat model. Brain Research. 2014; 1543(3) 263-70.
23. Nezhadi A, Ghazi F, Bakhtiari M, Ataiy Z, Mehdizadeh M. Differentiation of bone marrow stromal cells in dopaminergic cells in rat model of Parkinson’s disease. JAUMS. 2011; 8(4): 235-43. (In Persian).
24. Allbutt H N, Henderson J M. Use of the narrow beam test in the rat, 6-hydroxydopamine model of Parkinson’s disease. Journal of Neuroscience Methods. 2007; 159(1): 195–202.
25. Al-Jarrah M, Jamous M, Al-Zailaey K O, Bweir S. Endurance exercise training promotes angiogenesis in the brain of chronic/ progressive mouse model of Parkinson's disease. Neuro Rehabilitation. 2010; 26(4): 369-73.
26. Adami R, Scesa G, Bottai D. Stem cell transplantation in neurological diseases: Improving effectiveness in animal odels. Cell and Developmental Biology. 2014; 2(17): 1-28.
27. Wahl P, Brixius K, Bloch W. Exercise-induced stem cell activation and its implication for cardiovascular and skeletal muscle regeneration. Minimally Invasive Theraoy. 2008; 17(2): 91-99.
28. Polgar S, Karimi L, Morris M E. Stem cell therapy for Parkinson’s disease: Are double-blind randomized control trials the best design for quantifying therapy outcomes? J Neurol Neurophysiol. 2013; 4(5): 1-6.
29. Thomas M G, Stone L, Evill L, Ong S, Ziman M, Hool L. Bone marrow stromal cells as replacement cells for Parkinson's disease: Generation of an anatomical but not functional neuronal phenotype. Transl Res. 2011; 2(3): 45-53.
30. Nourshahi M, Taheri Chadorneshin H, Ranjbar K. The stimulus of angiogenesis during exercise and physical activity. Quarterly of the Horizon of Medical Sciences. 2013; 18(5): 286-96. (In Persian).
31. Villar-Cheda B, Sousa-Ribeiro D, Rodriguez-Pallares J, Rodriguez-Perez A I, Guerra M J, Labandeira-Garcia J L. Aging and sedentarism decrease vascularization and VEGF levels in the rat substantia nigra. Implications for Parkinson's disease. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 2008; 29(2): 230-4.
32. Cadet J, Last R, Osticv K, Rezedborski P, Lewis V J. Long term behavioral and biochemical effect of 6-OHDA injection in rat caudate putamen. Brain Res Ball. 1991; 26(2): 707-13.
33. Murray D K, Sacheli M A, Eng J J, Stoessl A J. The effects of exercise on cognition in Parkinson’s disease: A systematic review. Translational Neurodegeneration. 2014; 3(5): 1-13. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,257 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 846 |
||