همتی فارسانی, زهرا, بنی طالبی, ابراهیم, فرامرزی, محمد, بی غم صادق, امین. (1398). تأثیر شدت های مختلف تمرین مقاومتی و استقامتی بر بیان microRNA-133a و دو فاکتور نسخه‌برداری استئوژنز و آدیپوژنز Runx2 و PPARγ در مغز استخوان موش‌های صحرایی نر سالمند نژاد ویستار. , 11(42), 61-78. doi: 10.22089/spj.2018.6130.1791
زهرا همتی فارسانی; ابراهیم بنی طالبی; محمد فرامرزی; امین بی غم صادق. "تأثیر شدت های مختلف تمرین مقاومتی و استقامتی بر بیان microRNA-133a و دو فاکتور نسخه‌برداری استئوژنز و آدیپوژنز Runx2 و PPARγ در مغز استخوان موش‌های صحرایی نر سالمند نژاد ویستار". , 11, 42, 1398, 61-78. doi: 10.22089/spj.2018.6130.1791
همتی فارسانی, زهرا, بنی طالبی, ابراهیم, فرامرزی, محمد, بی غم صادق, امین. (1398). 'تأثیر شدت های مختلف تمرین مقاومتی و استقامتی بر بیان microRNA-133a و دو فاکتور نسخه‌برداری استئوژنز و آدیپوژنز Runx2 و PPARγ در مغز استخوان موش‌های صحرایی نر سالمند نژاد ویستار', , 11(42), pp. 61-78. doi: 10.22089/spj.2018.6130.1791
همتی فارسانی, زهرا, بنی طالبی, ابراهیم, فرامرزی, محمد, بی غم صادق, امین. تأثیر شدت های مختلف تمرین مقاومتی و استقامتی بر بیان microRNA-133a و دو فاکتور نسخه‌برداری استئوژنز و آدیپوژنز Runx2 و PPARγ در مغز استخوان موش‌های صحرایی نر سالمند نژاد ویستار. , 1398; 11(42): 61-78. doi: 10.22089/spj.2018.6130.1791

تأثیر شدت های مختلف تمرین مقاومتی و استقامتی بر بیان microRNA-133a و دو فاکتور نسخه‌برداری استئوژنز و آدیپوژنز Runx2 و PPARγ در مغز استخوان موش‌های صحرایی نر سالمند نژاد ویستار

فیزیولوژی ورزشی
مقاله 4، دوره 11، شماره 42، مرداد 1398، صفحه 61-78    اصل مقاله (692.44 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22089/spj.2018.6130.1791
نویسندگان
زهرا همتی فارسانی* 1؛ ابراهیم بنی طالبی2؛ محمد فرامرزی2؛ امین بی غم صادق3
1دانشجوی دکتری فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
2دانشیار فیزیولوژی ورزشی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
3استاد علوم درمانگاهی، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
چکیده
هدف از انجام مطالعة حاضر، تأثیر شدت‌های مختلف تمرین مقاومتی و استقامتی بر بیان microRNA-133a (mir-133a)، RUNX2 و گیرندة فعال‌کنندة تکثیر پروکسی زوم گاما (PPARγ) در مغز اسـتخوان موش‌های صحرایی نر سالمند نژاد ویستار بود. 40 سر موش صحرایی نر سالمند (میانگین سنی: 23 ماه، میانگین وزن: 27/438 گرم) نژاد ویستار به پنج گروه مساوی هشت‌تایی شامل تمرین‌های مقاومتی و استقامتی با شدت متوسط و شدید و گروه کنترل به‌طور تصادفی تقسیم شدند. تمرین‌های مقاومتی متوسط و شدید به‌ترتیب با شدت 60 درصد و 80 درصد حداکثر ظرفیت حمل ارادی با استفاده از نردبان مقاومتی، تمرین‌ استقامتی با شدت متوسط 70-60 درصد سرعت بیشینه و تمرین‌ استقامتی با شدت شدید 110-80 درصد سرعت بیشینه، با استفاده از تردمیل جوندگان انجام شدند و هر دو نوع تمرین پنج روز در هفته به‌مدت هشتهفته انجام شدند. بعد از پایان دورة تمرین، بیان mir-133a ، RUNX2 و PPARγ در بافت مغز استخوان تیبیا به روش RT–PCR اندازه‌گیری شد. تجزیه‌وتحلیل آماری با استفاده از آزمون کروسکال والیس در سطحP ≤ 0.05 انجام شد. این پژوهش نشان داد که میزان بیان mir-133a0.197) = P)، Runx2 (0.960 =P ) و PPARγ0.872) = P) در گروه‌های تمرینی با شدت بالا و متوسط در مقایسه با گروه کنترل تفاوت معناداری نداشت؛ بنابراین، به‌نظر می‌رسد که تغییرات سلولی متابولیسم استخوان پس از انجام چنین تمرین‌هایی به دوره‌های طولانی‌تر تمرین ورزشی یا اندازه‌گیری‌های دیگری به‌ویژه در سطح پروتئومیکس نیاز دارد که باید در پژوهش‌های آینده بررسی شود.
کلیدواژه‌ها
mir-133a؛ RUNX2؛ PPARγ؛ تمرین استقامتی و مقاومتی؛ متابولیسم استخوان
مراجع
  1. Qi Z, Liu W, Lu J. The mechanisms underlying the beneficial effects of exercise on bone remodeling: Roles of bone-derived cytokines and microRNAs. Prog Biophys Mol. 2016;122(2):131-9.
  2. Rosenthall L, Falutz J, Guaraldi G. The relationships between total body, lumbar spine and femoral neck bone mineral density T-scores for diagnosis of low bone mass in HIV-infected patients. J Clin Nutr Metab. 2018;1:2-5.
  3. Tuck SP, Datta HK. Osteoporosis in the aging male: Treatment options. Clin Interv Aging. 2007;2(4):521-36.
  4. Chen Q, Shou P, Zheng C, Jiang M, Cao G, Yang Q, et al. Fate decision of mesenchymal stem cells: Adipocytes or osteoblasts. Cell Death Differ. 2016;23(7):1128-39.
  5. Delaine-Smith RM, Reilly GC. Mesenchymal stem cell responses to mechanical stimuli. Muscles Ligaments Tendons J. 2012;2(3):169-80.
  6. Fahy N, Alini M, Stoddart MJ. Mechanical stimulation of mesenchymal stem cells: Implications for cartilage tissue engineering. J Orthop Res. 2018;36(1):52-63.
  7. Marędziak M, Śmieszek A, Chrząstek K, Basinska K, Marycz K. Physical activity increases the total number of bone-marrow-derived mesenchymal stem cells, enhances their osteogenic potential, and inhibits their adipogenic properties. Stem Cills Int. 2015;2015: 1-15
  8. Liu SY, Li Z, Xu SY, Xu L, Yang M, Ni GX. Intensity‑dependent effect of treadmill running on differentiation of rat bone marrow stromal cells. Mol Med Rep. 2018;17(6):7746-56.
  9. Hell RCR, Ocarino NM, Boeloni JN, Silva JF, Goes AM, Santos R L. Physical activity improves age‐related decline in the osteogenic potential of rats' bone marrow‐derived mesenchymal stem cells. Acta Physiol. 2012;205(2):292-301.
  10. Franceschi RT, Xiao G. Regulation of the osteoblast‐specific transcription factor, Runx2: Responsiveness to multiple signal transduction pathways. J Cell Biochem. 2003;88(3):446-54.
  11. Zhang Y, Khan D, Delling J, Tobiasch E. Mechanisms underlying the osteo-and adipo-differentiation of human mesenchymal stem cells. Sci World J. 2012;2012:       1-14
  12. Yuan Y, Zhang L, Tong X, Zhang M, Zhao Y, Guo J, et al. Mechanical stress regulates bone metabolism through micrornas. J Cell Physiol. 2017;232(6):1239-45.
  13. Mohan S, Wergedal JE, Das S, Kesavan C. Conditional disruption of miR17-92 cluster in collagen type I-producing osteoblasts results in reduced periosteal bone formation and bone anabolic response to exercise. Phsiyol Genomics. 2014;47(2):   33-43.
  14. Zuo B, Zhu JF, Li J, Wang CD, Zhao XY, Cai GQ, et al. MicroRNA‐103a functions as a mechanosensitive microRNA to inhibit bone formation through targeting runx2. J Bone Miner Res. 2015;30(2):330-45.
  15. Wang H, Sun Z, Wang Y, Hu Z, Zhou H, Zhang L, et al. MiR-33-5p, a novel mechano-sensitive microRNA promotes osteoblast differentiation by targeting Hmga2. Sci Rep-UK. 2016;6:23170-85.
  16. Bailey C, Brooke-Wavell K. Exercise for optimising peak bone mass in women: Postgraduate Symposium. P Nutr Soc. 2008;67(1):9-18.
  17. Kiuchi A, Shimegi S, Tanaka I, Izumo N, Fukuyama R, Nakamuta H, et al. Dose-response effects of exercise intensity on bone in ovariectomized rats. Int J Sport Health Sci. 2006;4:10-8.
  18. Song F, Jiang D, Wang T, Wang Y, Lou Y, Zhang Y. Mechanical stress regulates osteogenesis and adipogenesis of rat mesenchymal stem cells through PI3K/Akt/GSK-3β/β-catenin signaling pathway. Biomed Res Int. 2017; 2017: 6027402-10
  19. Gregov C, Šalaj S. The Effects of Different training modalities on bone mass: a Review. Kinesiol. Int J Fundam Appl Kinesiol. 2014;46(Supplement 1):10-29.
  20. Kohrt WM, Bloomfield SA, Little KD, Nelson ME, Yingling VR. Physical activity and bone health. Med Sci Sports Exerc. 2004;36(11):1985-96.
  21. Turner CH, Robling AG. Mechanisms by which exercise improves bone strength. J Bone Miner Metab. 2005;23(1):16-22.
  22. Markou KB, Mylonas P, Theodoropoulou A, Kontogiannis A, Leglise M, Vagenakis AG, et al. The influence of intensive physical exercise on bone acquisition in adolescent elite female and male artistic gymnasts. J Endocrinol Metab. 2004;89:4383–7.
  23. Maddalozzo GF, Snow CM. High intensity resistance training effects on bone in older men and women. Calcif Tissue Int. 2000;66:399–404.
  24. de Cassia Marqueti R, Almeida JA, Guzzoni V, Boghi F, Renner A, Silva PE, et al. Resistance training minimizes the biomechanical effects of aging in three different rat tendons. J Biomech. 2017;53:29-35.
  25. Krug AL, Macedo AG, Zago AS, Rush JWE, Santos CF, Amaral SL. High-intensity resistance training attenuates dexamethasone-induced muscle atrophy. Muscle Nerve. 2016;53(5):779-88.
  26. Macedo AG, Krug ALO, Herrera NA, Zago AS, Rush JWE, Amaralab SL. Low-intensity resistance training attenuates dexamethasone-induced atrophy in the flexor hallucis longus muscle. J Steroid Biochem Mol Biol. 2014;143:357-64.
  27. Leandro CG, Levada AC, Hirabara SM, Manhães-de-Castro R, De-Castro CB, Curi R, et al. aprogram of moderate physical training for wistar rats based on maximal oxygen consumption. J Strength Cond Res. 2007;21(3):751-6.
  28. Rezaei R, Norshahi M, Bigdeli M, Khodagholi F, Haghparast A. Effect of eight weeks continues and HIIT exercises on VEGF-A and VEGFR-2 levels in stratum, hippocampus and cortex of wistar rat brain. J PHYSIO sport PA. 2016;(16):1213-21. (In Persian).
  29. Fani F, Abbassi Daloii A, Abdi A. The effect of 8 weeks of endurance training and L-NAME on Apelin in adipose tissue in elderly male’s rats. J practi studi bio sport. 2016;4(8):77-88. (In Persian).
  30. Kim SH, Kim GJ, Umemura T, Lee SG, Cho KJ. Aberrant expression of plasma microRNA-33a in an atherosclerosis-risk group. Mol Biol Rep. 2017;44(1):79-88.
  31. Soves CP, Miller JD, Begun DL, Taichman RS, Hankenson KD, Goldsteina SA. Megakaryocytes are mechanically responsive and influence osteoblast proliferation and differentiation. Bone. 2014;66:111-20.
  32. Nie Y, Sato Y, Wang C, Yue F, Kuang S, Gavin TP. impaired exercise tolerance, mitochondrial biogenesis, and muscle fiber maintenance in miR-133a–deficient mice. FASEB Journal. 2016;30(11):3745-58.
  33. Gomes CPC, Oliveira-Jr GP, Madrid B, Almeida JA, Franco OL, Pereira RW. Circulating miR-1, miR-133a, and miR-206 levels are increased after a half-marathon run. Biomarkers. 2014;19(7):585-9.
  34. Nielsen S, Scheele C, Yfanti C, Åkerström T, Nielsen AR, Pedersen BK, et al. Muscle specific microRNAs are regulated by endurance exercise in human skeletal muscle. J Physiol. 2010;588(20):4029-37.
  35. Ogasawara R, Akimoto T, Umeno T, Sawada S, Hamaoka T, Fujita S. MicroRNA expression profiling in skeletal muscle reveals different regulatory patterns in high and low responders to resistance training. Physiol Genomics. 2016;48(4):320-4.
  36. Li M, Bai Y, Jianfei C, Xiaodong X, Yuanyuan D, Jing Z. Effects of different exercise intensity on PPARγ and relative index in adolescent obesity rats. Wei Sheng Yan Jiu. 2014;43(5):732-7.
  37. Thomas AW, Davies NA, Moir H, Watkeys L, Ruffino JS, Isa SA, et al. Exercise-associated generation of PPARγ ligands activates PPARγ signaling events and upregulates genes related to lipid metabolism. J Appl Physiol. 2011;112(5): 806-15.
  38. Li Y, Ge C, Long JP, Begun DL, Rodriguez JA, Goldstein SA, et al., Biomechanical stimulation of osteoblast gene expression requires phosphorylation of the RUNX2 transcription factor. J Bone Miner Res. 2012;27(6):1263-74.
  39. Ziros PG Basdra EK, Papavassiliou AG. Runx2: of bone and stretch. Int. J Biochem Cell Biol. 2008;40(9):1659-63.
  40. Singulani MP, Stringhetta-Garcia CT, Santos LF, Morais SRL, Louzada MJQ, Oliveira SHP, et al. Effects of strength training on osteogenic differentiation and bone strength in aging female Wistar rats. Sci Rep-UK. 2017;7(1):42878-9.
  41. Turner CH, Takano Y, Owan I. Aging changes mechanical loading thresholds for bone formation in rats. J Bone Miner Res. 1995;10(10):1544-9.
  42. Aido MIFd. The influence of age and mechanical loading on bone structure and material properties. TU Berlin: IBMS BoneKE; 2015: 84-8
  43. Going SB, Farr JN. Exercise and bone macro-architecture: is childhood a window of opportunity for osteoporosis prevention? Int J Body Compos Res. 2010;8(1):1-9.
  44. Razi H, Birkhold AI, Weinkamer R, Duda GN, Willie BM, Checa S. Aging leads to a dysregulation in mechanically driven bone formation and resorption. J Bone Miner Res. 2015;30(10):1864-73.
  45. Heinonen A, Oja P, Kannus P, Sievanen H, Haapasalo H, Mänttäri A, et al. Bone mineral density in female athletes representing sports with different loading characteristics of the skeleton. Bone. 1995;17(3):197-203.
  46. Wheater G, Elshahaly M, Tuck SP, Datta HK, van Laar JM. The clinical utility of bone marker measurements in osteoporosis. J Transl Med. 2013;11(1):201-14.
  47. Shimamura C, Iwamoto J, Takeda T, Ichimura S, Abe H, Toyama Y. Effect of decreased physical activity on bone mass in exercise-trained young rats. J Orthop Sci. 2002;7(3):358-63.
  48. Sinaki M, Wahner HW, Bergstralh EJ, Hodgson SF, Offord KP, Squires RW, et al. Three-year controlled, randomized trial of the effect of dose-specified loading and strengthening exercises on bone mineral density of spine and femur in nonathletic, physically active women. Bone. 1996;19(3):233-44.
  49. Turner C. Functional determinants of bone structure: beyond Wolff's law of bone transformation. Elsevier. 1992;13(6): 403-9.
  50. Forwood MR, Burr DB. Physical activity and bone mass: Exercises in futility. Bone Miner. 1993;21(2):89-112.
  51. Kotha SP, Hsieh YF, Strigel RM, Muller R, Silva MJ. Experimental and finite element analysis of the rat ulnar loading model-correlations between strain and bone formation following fatigue loading. J Biomech. 2004;37(4):541-8.
  52. Uthgenannt BA, Silva MJ. Use of the rat forelimb compression model to create discrete levels of bone damage in vivo. J Biomech. 2007;40(2):317-24.
  53. Luu YK, Capilla E, Rosen CJ, Gilsanz V, Pessin JE, Judex S, et al. Mechanical stimulation of mesenchymal stem cell proliferation and differentiation promotes osteogenesis while preventing dietary‐induced obesity. J Bone Miner Res. 2009;24(1):50-61.
  54. David V, Martin A, Lafage-Proust MH, Malaval L, Peyroche S, Jones DB, et al. Mechanical loading down-regulates peroxisome proliferator-activated receptor γ in bone marrow stromal cells and favors osteoblastogenesis at the expense of adipogenesis. Endocrinology. 2007;148(5):2553-62.
  55. Sen B, Xie Z, Case N, Ma M, Rubin C, Rubin J. Mechanical strain inhibits adipogenesis in mesenchymal stem cells by stimulating a durable beta-catenin signal. Endocrinology. 2008;149(12):6065-75.
  56. Tanabe Y, Koga M, Saito M, Matsunaga Y, Nakayama K. Inhibition of adipocyte differentiation by mechanical stretching through ERK-mediated downregulation of PPARgamma2. J Cell Sci. 2004;117(16):3605–14
  57. Marie P, Kaabeche K. PPAR gamma activity and control of bone mass in skeletal unloading. Ppar Res. 2006; 2006(1): 1-6.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 2,783
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 607
پژوهشگاه تربیت بدنی و علوم ورزشی
آمار
تعداد نشریات9
تعداد شماره‌ها334
تعداد مقالات4,100
تعداد مشاهده مقاله8,609,518
تعداد دریافت فایل اصل مقاله3,106,141